Core Unit Metabolomics
Core Unit Metabolomics
Metabolomics ist neben Genomics, Transkriptomics und Proteomics eine der „omics“ Disziplinen, welche zur Beschreibung von biologischen Systemen genutzt werden. Die noch relativ junge Forschungsrichtung profitiert von den technischen Entwicklung auf dem Gebiet der Massenspektrometrie, vor allem im Bezug auf hochauflösende Massenspektrometer, und erlebte einen starken Aufschwung seit 2005.
Im Gegensatz zu den anderen drei Forschungsrichtungen, zielt Metabolomics auf die analytische Erfassung der Gesamtheit aller niedermolekularen Stoffwechselverbindungen in einem biologischen System. Die untersuchte biologische Matrix kann hierbei je nach Fragestellung stark variieren (Urin, Plasma, Zelllysate, Gewebe, etc.).
Ein Ziel der Metabolomicsforschung ist es den metabolischen Status eines Systems festzustellen und Veränderungen auf diesem Level mit physiologischen oder pathologischen Prozessen in Verbindung zu bringen. Dies wird oftmals durch eine vergleichende Analyse (z.B. gesund vs krank) erreicht und ist besonders für Krankheitsforschung interessant. Das bessere Verständnis von Krankheiten und deren Manifestation auf niedermolekularem metabolomischem Level eröffnet hierbei neue Möglichkeiten für die Entwicklung von Krankheitsmodellen und neuen Arzneimitteln.
Metabolomics kann in untargeted und targeted Metabolomics unterteilt werden. Während man bei untargeted eine Probe hinsichtlich aller erfassbaren Metaboliten analysiert und semi-quantitative Informationen erhält, werden im targeted Mode gezielt bestimmte endogene Substanzen analysiert und quantifiziert.
Für untargeted Metabolomics-Analysen steht dem Lehrstuhl über einen DFG-Antrag erworbenes QExactive Focus Massenspektrometer zur Verfügung. Die targeted Analysen werden an zwei weiteren DFG geförderten Massenspektrometern (API 4000 Triple-Quadrupol-MS und QTRAP 6500+) durchgeführt.
Bei Interesse an einer Kollaboration mit der Core Unit Metabolomics der Medizinischen Fakultät können Sie gerne eine email an klinpharm-analytik@fau.de schreiben. Infomaterialien bezüglich Anfragen für Analysen, Probenvorbereitung und Probenversand finden Sie hier:
- Anfrage Metabolomics-Analyse
- SOP Probenvorbereitung
- Checkliste Probenversand
- Nutzerordnung Core Unit
Zur Zeit arbeitet die Massenspektrometrie-Einheit an verschiedenen Projekten in der Krankheitsforschung sowie an der Entdeckung neuer endogener Substrate oder Inhibitoren von Transportproteinen.
Dank hochsensitiver LC-MS/MS-Methodik können Substanzen bis in den nanomolaren Konzentrationsbereich sicher quantifiziert werden. Bei der Methodenentwicklung wird auf eine Anwendbarkeit für eine hohe Anzahl an Proben pro Studie, bei möglichst geringem, benötigtem Probenvolumen Wert gelegt. Eine Validierung der Messmethode erfolgt nach international üblichen Richtlinien.
Kürzlich entwickelte Methoden am Lehrstuhl für Klinische Pharmakologie und Klinische Toxikologie legen ihren Fokus auf die Analyse von Risikofaktoren für kardiovaskuläre Erkrankungen (z.B. Trimethylamin-N-Oxid) oder endogenen Substraten für Transportproteine (z.B. 1-Methylnicotinamid). Die untersuchten Matrices umfassen u.a. Plasma, Urin oder Lysate von Zellmodellen.
Surrer DB, Schüsser S, König J, Fromm MF, Gessner A. Transport of aromatic amino acids L-tryptophan, L-tyrosine, and L-phenylalanine by the organic anion transporting polypeptide (OATP) 3A1.
FEBS J, 2024, 291: 4732-4743
Gessner A, König J, Wenisch P, Heinrich MR, Stopfer P, Fromm MF, Müller F. New biomarkers for renal transporter-mediated drug-drug interactions: metabolomic effects of cimetidine, probenecid, verapamil, and rifampin in humans.
Clin Pharmacol Ther, 2024, epub
Kachler K, Andreev D, Thapa S, Royzman D, Gießl A, Karuppusamy S, Perez ML, Liu M, Hofmann J, Gessner A, Meng X, Rauber S, Steinkasserer A, Fromm M, Schett G, Bozec A. Acod1-mediated inhibition of aerobic glycolysis suppresses osteoclast differentiation and attenuates bone erosion in arthritis.
Ann Rheum Dis, 2024, 83: 1691-1706
Auger JP, Zimmermann M, Faas M, Stifel U, Chambers D, Krishnacoumar B, Taudte RV, Grund C, Erdmann G, Scholtysek C, Uderhardt S, Ben Brahim O, Pascual Maté M, Stoll C, Böttcher M, Palumbo-Zerr K, Mangan MSJ, Dzamukova M, Kieler M, Hofmann M, Blüml S, Schabbauer G, Mougiakakos D, Sonnewald U, Hartmann F, Simon D, Kleyer A, Grüneboom A, Finotto S, Latz E, Hofmann J, Schett G, Tuckermann J, Krönke G. Metabolic rewiring promotes anti-inflammatory effects of glucocorticoids.
Nature, 2024, 629: 184-192
Cao S, Li Y, Song R, Meng X, Fuchs M, Liang C, Kachler K, Meng X, Wen J, Schlötzer-Schrehardt U, Taudte V, Gessner A, Kunz M, Schleicher U, Zaiss MM, Kastbom A, Chen X, Schett G, Bozec A. L-arginine metabolism inhibits arthritis and inflammatory bone loss.
Ann Rheum Dis, 2024, 83: 72-87
Schulz-Kuhnt A, Rühle K, Javidmehr A, Döbrönti M, Biwank J, Knittel S, Neidlinger P, Leupold J, Liu L-J, Dedden M, Taudte RV, Gessner A, Fromm MF, Mielenz D, Kreiss L, Waldner MJ, Schürmann S, Friedrich O, Dietel B, López-Posadas R, Plattner C, The TRR241 IBDome Consortium, Zundler S, Becker C, Atreya R, Neurath MF#, Atreya I#. ATP citrate lyase (ACLY)-dependent immunometabolism in mucosal T cells drives experimental colitis in vivo.
Gut, 2024, 73, 601-612 (#authors contributed equally)
Gessner A, Müller F, Wenisch P, Heinrich MR, König J, Stopfer P, Fromm MF. A metabolomic analysis of sensitivity and specificity of 23 previously proposed biomarkers for renal transporter-mediated drug-drug interactions.
Clin Pharmacol Ther, 2023, 114: 1058-72
Sonomoto K, Song R, Eriksson D, Hahn AM, Meng X, Lyu P, Cao S, Liu N, Taudte RV, Wirtz S, Tanaka Y, Winkler TH, Schett G, Soulat D, Bozec A. High-fat-diet-associated intestinal microbiota exacerbates psoriasis-like inflammation by enhancing systemic γδ T cell IL-17 production.
Cell Rep, 2022, 42: 112713
Müller F, Hohl K, Keller S, Schmidt-Gerets S, Deutsch B, Schuler-Metz A, Fromm MF, Stopfer P, Gessner A. N1-methylnicotinamide as biomarker for MATE-mediated renal drug-drug interactions: impact of cimetidine, rifampin, verapamil, and probenecid.
Clin Pharmacol Ther, 2023, 113: 1070-1079
Urbanczyk S, Baris OR, Hofmann J, Taudte VR, Guegen N, Golombek F, Castiglione K, Meng X, Bozec A, Thomas J, Weckwerth L, Mougiakakos D, Schulz SR, Schuh W, Schlötzer-Schrehardt U, Steinmetz TD, Brodesser S, Wiesner RJ, Mielenz D. Mitochondrial respiration in B lymphocytes is essential for humoral immunity by controlling the flux of the TCA cycle
Cell Reports, 2022, 10:110912
Gessner A, Gemeinhardt A, Bosch A, Kannenkeril D, Staerk C, Mayr A, Fromm MF, Schmieder RE, Maas R. Effects of treatment with SGLT-2 inhibitors on arginine-related cardiovascular and renal biomarkers.
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Gessner A, di Giuseppe R, Koch M, Fromm MF, Lieb W, Maas R. Trimethylamine-N-oxide (TMAO) determined by LC-MS/MS: distribution and correlates in the population-based PopGen cohort.
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Burdin DV, Kolobov AA, Brocker C, Soshnev AA, Samusik N, Demyanov AV, Brilloff S, Jarzebska N, Martens-Lobenhoffer J, Mieth M, Maas R, Bornstein SR, Bode-Böger SM, Gonzalez F, Weiss N, Rodionov RN. Diabetes-linked transcription factor HNF4α regulates metabolism of endogenous methylarginines and β-aminoisobutyric acid by controlling expression of alanine-glyoxylate aminotransferase 2.
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Rodionov RN, Oppici E, Martens-Lobenhoffer J, Jarzebska N, Brilloff S, Burdin DV, Demyanov AV, Kolouschek A, Leiper J, Maas R, Cellini B, Weiss N, Bode-Böger SM. A novel pathway for metabolism of the cardiovascular risk factor homoarginine by alanine:glyoxylate aminotransferase 2.
Sci Rep, 2016, 6: 35277
Müller F, Pontones CA, Renner B, Mieth M, Hoier E, Auge D, Maas R, Zolk O, Fromm MF. N1-methylnicotinamide as an endogenous probe for drug interactions by renal cation transporters: studies on the metformin-trimethoprim interaction.
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Rodionov RN, Martens-Lobenhoffer J, Brilloff S, Hohenstein B, Jarzebska N, Jabs N, Kittel A, Maas R, Weiss N, Bode-Böger SM. Role of alanine:glyoxylate aminotransferase 2 in metabolism of asymmetric dimethylarginine in the settings of asymmetric dimethylarginine overload and bilateral nephrectomy.
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Kittel A, Müller F, König J, Mieth M, Sticht H, Zolk O, Kralj A, Heinrich MR, Fromm MF, Maas R. Alanine-glyoxylate aminotransferase 2 (AGXT2) polymorphisms have considerable impact on methylarginine and beta-aminoisobutyrate metabolism in healthy volunteers.
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Strobel J, Müller F, Zolk O, Endress B, König J, Fromm MF, Maas R. Transport of asymmetric dimethylarginine (ADMA) by cationic amino acid transporter 2 (CAT2), organic cation transporter 2 (OCT2) and multidrug and toxin extrusion protein 1 (MATE1).
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Kittel A, Maas R, König J, Mieth M, Weiss N, Jarzebska N, Hohenstein B, Martens-Lobenhoffer J, Bode-Böger SM, Rodionov RN. In vivo evidence that Agxt2 can regulate plasma levels of dimethylarginines in mice.
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Ravani P, Maas R, Malberti F, Pecchini P, Mieth M, Quinn R, Tripepi G, Mallamaci F, Zoccali C. Homoarginine and mortality in pre-dialysis chronic kidney disease (CKD) patients.
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Pecchini P, Malberti F, Mieth M, Quinn R, Tripepi G, Mallamaci F, Maas R, Zoccali C, Ravani P. Measuring asymmetric dimethylarginine (ADMA) in CKD: a comparison between enzyme-linked immunosorbent assay and liquid chromatography-electrospray tandem mass spectrometry.
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